Accidents et prévention des expériences animales dans le laboratoire de biosécurité animale

Laboratoire d'animation

Les tests d’infection animale sur des micro-organismes pathogènes sont un élément important de prévention des risques d’accidents de sécurité biologique. Les agents pathogènes transportés par les animaux infectés peuvent infecter les travailleurs expérimentaux par des aérosols atmosphériques, des sécrétions et des excréments pendant l’opération.
Le fonctionnement de l’infection animale implique l’anesthésie animale, l’administration de médicaments, le prélèvement d’échantillons, l’euthanasie et l’autopsie. L’expérience sur l’embryon de poulet peut également être attribuée à l’exploitation d’animaux infectés, ce qui peut provoquer divers accidents. Cet article expliquera les types d’accidents, les plans d’urgence, les opérations sur les sites d’accident et la prévention des accidents un par un.

1. Types d'accidents dans le laboratoire animalier

1.1 Plaies coupantes ou coupantes Les plaies coupantes surviennent souvent lors du processus d’anesthésie, d’administration de médicaments, d’échantillonnage et d’inoculation d’embryons de poulet. Les blessures par incision surviennent souvent pendant la chirurgie, l’anatomie, etc.
1.2 Morsures d’éraflure Les morsures d’éraflure se produisent souvent pendant le processus de remplacement de la litière, l’anesthésie, la mesure de la température, etc.
1.3 Les animaux s’échappent souvent pendant l’anesthésie et le remplacement de la litière.
1.4 Surdosage d’anesthésie Le surdosage d’anesthésie chez les animaux de taille moyenne et grande est considéré comme un accident.
1.5 Expérience inattendue sur l’embryon de poulet
· Poignardement lors de l’inoculation d’embryons de poulet
· Déversements lors de la collecte de virus
· Chute lors du transport d’embryons de poulet

2. Plan d'urgence pour les accidents en laboratoire animalier

2.1 En réponse à d’éventuels accidents d’expérimentation animale infectieuse, afin d’assurer le fonctionnement sûr et stable du laboratoire de biosécurité, un plan efficace de gestion des accidents devrait être formulé.
2.2 Le principe de la procédure d’élimination en cas d’accident est de protéger la santé et la sécurité du personnel et de minimiser la pollution de l’environnement du laboratoire et de l’environnement extérieur.
2.3 Le principe de la prise de mesures est de contrôler la prolifération, de contrôler la source de l’infection et d’éliminer en toute sécurité les matériaux contaminés et les lieux contaminés.
2.4 Le plan d’urgence doit inclure (sans s’y limiter): la personne responsable, l’organisation, les communications d’urgence, le contenu du rapport, les procédures de protection individuelle et d’intervention, l’équipement d’urgence, les plans et itinéraires d’évacuation, l’isolement et la désinfection des sources de pollution, l’isolement et le traitement du personnel, isolement et contrôle sur site, communication des risques, etc.
2.5 Le laboratoire devrait former tout le personnel (y compris les visiteurs) à se familiariser avec les procédures d’urgence, les itinéraires d’évacuation et les lieux de rassemblement d’évacuation; effectuer au moins un forage par an

3. points clés de la gestion sur site des accidents dans le laboratoire animalier

Lorsqu’un accident animal survient dans le laboratoire, l’élimination sur place est très importante et une manipulation détaillée réduira considérablement le risque de contamination du laboratoire et d’infection du personnel. En même temps, il est équipé de l’équipement de premiers secours et de l’équipement nécessaires pour le traitement et l’utilisation sur place. L’emplacement de la trousse de premiers soins: doit être placé dans la zone de protection. Composition (y compris mais sans s’y limiter): 75% d’éthanol, iodophore, pansement, gaze, bandage, ciseaux / pincettes, ruban médical, etc.

01) Traitement sur place des blessures par piqûre d’aiguille / coupures, rayures et morsures
① Arrêtez immédiatement l’expérience et placez les animaux de laboratoire dans une cage scellée.
② Un autre expérimentateur a pulvérisé de l’éthanol à 75% sur la personne blessée et a enlevé ses gants (dans l’enceinte de sécurité biologique)
③ Pressez la pièce avec vos mains pour faire couler le sang et lavez la plaie avec de l’eau propre ou de l’eau d’un collyre.
④ Sortez la trousse de premiers soins et essuyez la peau contaminée et la plaie avec de l’iodophore ou un désinfectant approprié plusieurs fois.
⑤ Habillez correctement la plaie, portez des gants propres, évacuez et sortez du laboratoire selon l’itinéraire prescrit
⑥ Rapport d’accident
⑦ Évaluation médicale / traitement hospitalier désigné / isolement, etc.
L’objectif de la prise en charge sur site de ce type d’accident:
① Contrôle des animaux
② Nettoyez la plaie
image

02) Traitement sur place des évasions d’animaux
① Arrêtez immédiatement l’expérience et lancez la chasse. En principe, le personnel ne doit pas quitter le laboratoire animal avant d’avoir attrapé l’animal qui s’est échappé.
② Si un petit rongeur s’échappe vers le laboratoire, utilisez immédiatement une pince à épiler à long manche pour serrer rapidement et fermement la racine de la queue pour saisir l’animal et le placer dans la cage. Si l’animal s’échappe rapidement et n’est pas facile à saisir avec une pince à épiler, utilisez un sac en filet spécial pour le saisir. Si l’animal s’échappe dans un endroit sous l’équipement qui n’est pas facile à saisir, utilisez la poignée du sac en filet (le sac en filet peut être divisé en une poignée et un sac en filet) pour chasser avec précaution l’animal de l’équipement avant de le saisir.
③ Augmentez la fréquence de ventilation intérieure, couvrez la voie d’évacuation de l’animal et le sang et les sécrétions éclaboussés par l’animal avec un chiffon désinfectant humide ou une serviette en papier pendant 30 minutes, puis placez-le dans le récipient spécifié pour l’autoclavage; et faire rapport à la personne de garde. Organiser une deuxième décontamination.
L’objectif de la prise en charge sur site de ce type d’accident:
① La fuite des rongeurs est plus fréquente et la capture doit être confinée au laboratoire. Ne paniquez pas et saisissez plusieurs fois. Minimisez l’irritation des animaux.
② En principe, les animaux qui s’échappent ne doivent pas quitter le laboratoire avant d’être abattus, afin d’empêcher les animaux de s’échapper du laboratoire vers la zone publique et de provoquer des incidents de santé publique plus importants.

03) Traitement sur place d’un surdosage anesthésique
Signes de surdosage anesthésique
Légère: fait référence aux animaux de laboratoire qui ont considérablement ralenti leur rythme respiratoire et qui présentent une légère hypoxie, comme la langue passant du rouge vif au sombre, mais qui respirent toujours régulièrement. La profondeur de la respiration est normale et le système circulatoire ne présente aucun obstacle évident. La pression artérielle et le rythme cardiaque sont normaux.
Sévère: la fréquence respiratoire diminue considérablement et irrégulièrement, parfois non, et soudainement une hypoxie évidente profonde et peu profonde, telle qu’une langue violette, la pression partielle et la saturation en oxygène dans le test sanguin sont considérablement réduites et le système circulatoire est affecté, si le rythme cardiaque ralentit, la pression artérielle baisse. Cependant, des réflexes cornéens existent.
Critique: arrêt respiratoire, rythme cardiaque lent et irrégulier, baisse de la tension artérielle ou arrêt cardiaque.
Approche
① Lorsque la respiration est extrêmement lente et irrégulière, mais que le rythme cardiaque est normal: pratiquer la respiration artificielle-compression thoracique et administrer des agents de rajeunissement appropriés.
② Lorsque la respiration est arrêtée et qu’il y a encore des battements de cœur: ① Pratiquer la respiration artificielle, utiliser un ventilateur artificiel ou de l’oxygène si nécessaire (l’inhalation d’O2 représente 95%, le CO2 représente 5%); ② Injectez une solution de glucose à 50%; ③ Donnez de l’adrénaline et un agent rajeunissant. Utilisez du bicarbonate de sodium à 5% par voie intraveineuse pour corriger l’acidose.
③ Lors de la respiration et de l’arrêt du rythme cardiaque: injection intracardiaque d’une solution d’adrénaline 1: 10000. Le stimulant respiratoire 25% Nixamir est injecté par voie intraveineuse ou intracardiaque. Une injection de 20 mg / mL de dopamine augmente la pression artérielle. Utilisez du bicarbonate de sodium à 5% par voie intraveineuse pour corriger l’acidose.
L’objectif de la prise en charge sur site de ce type d’accident:
① Les animaux de taille moyenne et grande sont sujets à une surdose d’anesthésie.
② Évitez les égratignures et les morsures lors des premiers soins en cas de surdosage anesthésique.
image
04) Gestion des accidents dans l’expérience d’embryon de poulet
Poignardement lors de l’inoculation d’embryons de poulet – le traitement est le même que 1 « traitement par coup de couteau »
Les déversements pendant la collecte et le traitement des virus sont les mêmes que les «déversements de substances infectieuses»
Manipulation de la chute lors du transport d’embryons de poulet
① Couvrez la zone de dépôt avec du papier absorbant, versez le désinfectant contenant 1% de chlore disponible de l’extérieur vers l’intérieur, enveloppez la coquille d’œuf et le jaune d’œuf et d’autres solides, récupérez-les avec une pince à épiler et placez-les dans le récipient spécifié pour l’autoclavage; et faire rapport à la personne de garde. Organiser une deuxième décontamination.
② Versez le désinfectant dans un rayon de 1 mètre de la zone de chute et agissez pendant 30 minutes.
③ Après avoir pulvérisé du désinfectant partout, l’expérimentateur sort selon la voie prescrite
④ Signalez au personnel de service de nettoyer une seconde fois le laboratoire.
L’objectif de la prise en charge sur site de ce type d’accident:
① Le jaune d’oeuf est classé comme substance solide et doit être collecté sous haute pression
② Le liquide allantoic est visqueux et sa désinfection prend plus de temps que les liquides normaux.
③ Le choix du désinfectant dépend de l’agent pathogène utilisé. Le désinfectant au chlore est un désinfectant général.

4. Prévention des accidents dans le laboratoire animalier

01) Bâtons d’aiguilles, coupures, rayures et morsures
① Porter des gants de protection: gants anti-morsure / gants anti-coupure
② Utilisez un support adapté
③ Opérez une fois que l’animal est complètement anesthésié.
02) Évasion animale
① Opérez après que l’animal est complètement anesthésié
② Participer à la formation technique du Baoding animal
③ Fonctionnement dans l’enceinte de sécurité biologique
④ Assurez-vous que la cage est couverte et remettez-la dans le support de cage; les primates doivent être équipés de verrous de cage appropriés.
03) Surdosage d’anesthésie
① Utilisez des anesthésiques
② Petite quantité d’administration divisée
a) La température corporelle de l’animal est facile à baisser pendant la période d’anesthésie et des mesures d’isolation doivent être prises.
b) L’injection intraveineuse doit être lente. En même temps, observez la tension musculaire, le réflexe cornéen et la réponse au pincement cutané. Lorsque ces activités sont significativement affaiblies ou ont disparu, l’injection doit être arrêtée immédiatement. Lors d’expériences chroniques, pendant l’hiver froid, l’anesthésique doit être chauffé à la température corporelle de l’animal avant l’injection.
③ Equipé de premiers secours anesthésiques: cardiotonique, stimulant respiratoire, bicarbonate de sodium (utilisé pour corriger l’acidose), glucose hypertonique (utilisé pour augmenter la tension artérielle), etc.
04) Expérience d’embryon de poulet
Le transfert d’embryons utilise un conteneur d’expédition. Les embryons de poulet inoculés avec des micro-organismes doivent être transportés dans le laboratoire avec un emballage double couche dur, incassable et résistant à haute pression pour éviter les éclaboussures et les déversements lors de la chute, et pour confiner les micro-organismes pathogènes dans le récipient d’emballage pour une désinfection et une stérilisation ultérieures.

Retour haut de page